免疫熒光的方法有什么注意環(huán)節？

1、冰凍切片制備：建議用新鮮組織，否則組織細胞內部結構破壞，易使抗原彌散。選用干凈鋒利的刀片、組織一定要冷凍適度等，防止裂片和脫片嚴重。
2、組織切片固定：切好片風(fēng)干后立即用冰丙酮等固定液進(jìn)行固定 5-10 min，尤其要較長(cháng)時(shí)間保存的白片，一定要及時(shí)固定和適當保存。
3、血清封閉：為防止內源性非特異性蛋白抗原的結合，需要在一抗孵育前先用血清（與二抗來(lái)源一致）封閉，減弱背景著(zhù)色。血清封閉的時(shí)間是可以調整的，一般 10-30 min。
4、一抗孵育條件：在免疫組化反應中最重要，包括孵育時(shí)間和抗體濃度。一抗孵育溫度有幾種：4℃ 、室溫、37℃ ，其中 4℃ 效果最佳；孵育時(shí)間：這與溫度、抗體濃度有關(guān)，一般 37℃ 1-2 h，而 4℃ 過(guò)宿和從冰箱拿出后 37℃ 復溫 45 min。具體條件還要摸索。
5、二抗孵育條件：二抗一般室溫或 37℃ 立即觀(guān)察，若將標本放在聚乙烯塑料袋中 4℃ 30 min-1h，具體時(shí)間需要摸索，而濃度一般有工作液，若是濃縮液還要摸索濃度，切記要避光反應。但在免疫熒光中我們一般先把二抗濃度和孵育時(shí)間先定下，然后去摸索一抗濃度和孵育時(shí)間。最后，熒光素標記的二抗隨著(zhù)保存時(shí)間的延長(cháng)，可能后有大量的游離熒光素殘留，需要注意配制時(shí)小包裝和并進(jìn)行適當的離心。
6、復染：目的是形成細胞輪廓，從而更好地對目標蛋白進(jìn)行定位。一般常用 DAPI 復染。
7、封片：為了長(cháng)期保存，我們一般用緩沖甘油等封片，此外還有專(zhuān)門(mén)的抗熒光萃滅封片液。避免產(chǎn)生氣泡，方法是直接在載玻片組織上滴一滴封片液，然后一手拿住蓋片某一拐角，而另一手拿對面的那個(gè)拐角，接近封片液近端的拐角先降低，直至接觸到液體時(shí)為止；當發(fā)現液體接觸面在不斷彌散時(shí)，則可以緩慢降低另一拐角，這樣一般不會(huì )產(chǎn)生氣泡。
8、切片清洗：為了防止一抗、二抗等試劑殘留而引起非特異性染色，所以適當地加強清洗（延長(cháng)時(shí)間和增多次數）尤為重要，我一般在一抗孵育前的清洗是 3 min*3 次，而一抗孵育后的清洗均為 5 次*5 min。注意：?jiǎn)为殯_洗，防止交叉反應造成污染。溫柔沖洗，防止切片的脫落。我喜歡用浸洗方式；沖洗的時(shí)間要足夠，才能徹底洗去結合的物質(zhì)。PBS 的 pH 和離子強度的使用和要求。這方面我有慘痛教訓，當時(shí)我買(mǎi)的抗體稀釋液偏酸，結果背景一片黃（未見(jiàn)特異性染色），建議 pH 在 7.4-7.6 濃度是 0.01 M。（中性及弱鹼性條件（pH7-8）有利于免疫復合物的形成，而酸性條件則有利于分解；低離子強度有利于免疫復合物的形成，而高離子強度則有利于分解）
9、拍照：有條件的話(huà)最好立即拍照，若不能及時(shí)拍照，也要封好片和用指甲油封固，保持避光和濕度。使用熒光顯微鏡注意嚴格按照熒光顯微鏡出廠(chǎng)說(shuō)明書(shū)要求進(jìn)行操作，不要隨意改變程序；應在暗室中進(jìn)行檢查；防止紫外線(xiàn)對眼睛的損害，在調整光源時(shí)應戴上防護眼鏡；檢查時(shí)間每次以1~2 h 為宜，超過(guò) 90 min，超高壓汞燈發(fā)光強度逐漸下降，熒光減弱；標本受紫外線(xiàn)照射 3~5 min 后，熒光也明顯減弱或褪色；激發(fā)光長(cháng)時(shí)間的照射，會(huì )發(fā)生熒光的衰減和淬滅現象；所以最多不得超過(guò) 2~3 h；熒光顯微鏡光源壽命有限，標本應集中檢查，以節省時(shí)間，保護光源。天熱時(shí)，應加電扇散熱降溫，新?lián)Q燈泡應從開(kāi)始就記錄使用時(shí)間。燈熄滅后欲再啟用時(shí)，須待燈光充分冷卻后才能點(diǎn)燃。一天中應避免數次點(diǎn)燃光源。關(guān)閉汞燈至少在開(kāi)啟 15-30 分鐘后；標本染色后立即觀(guān)察，因時(shí)間久了熒光會(huì )逐漸減弱。若將標本放在聚乙烯塑料袋中 4℃ 保存，可延緩熒光減弱時(shí)間，防止封裱劑蒸發(fā)；使用的玻片等載體，都必須厚度均勻，無(wú)明顯的自發(fā)熒光，如果使用油鏡，還必須保證鏡油為無(wú)熒光鏡油；電源最好裝穩壓器，否則電壓不穩不僅會(huì )降低汞燈的壽命，也會(huì )影響鏡檢的效果。