產(chǎn)品分類(lèi)
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實(shí)驗室儀器
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抗體保存知多少
[2013/3/18]
通常情況下,抗體經(jīng)恰當保存和處理,大多數應能保持活性數月乃至數年。當然,不同類(lèi)型抗體,其保存的方法也可能不一樣,以下就抗體的保存,提供一些參考!
一、保存溫度和條件
對于很多抗體而言,保存在-20℃是完全足夠了,沒(méi)有任何證據顯示保存在-80℃會(huì )有更多的好處!分裝成小等份可最大程度減少由凍融造成的損傷,以及從單個(gè)試劑瓶中多次吸取而引入的污染。小等份只需凍融一次,如有剩余,可將剩余物保存于 4oC. 在收到抗體時(shí),在 10,000 × g 下離心 20 秒以沉積截留于試劑瓶螺紋的溶液,并以小等份轉移至低蛋白結合微量離心管中。小等份的量取決于實(shí)驗人員在實(shí)驗中通常采用的量。小等份應不小于10 µl; 等份越小,儲液濃度因抗體蒸發(fā)及吸附于保存瓶表面而受到的影響越大。
在大多數情況下,收到抗體時(shí)在 4oC 下保存一至兩周,然后再冷凍進(jìn)行長(cháng)期保存是可接受的,但也許腹水液是例外,它可能包含蛋白酶,因而應該盡快凍存。同樣,遵照說(shuō)明書(shū)上的建議是重要的。
大部分抗體的運輸條件:一般的運輸過(guò)程需要1-2周的時(shí)間,所以是在4℃的條件下來(lái)完成的。
對于特殊的抗體,如酶、熒光素等偶聯(lián)抗體、IgG3同型抗體等抗體的保存有其注意事項:
1、偶聯(lián)抗體 酶偶聯(lián)抗體不應凍存,而應保存于 4oC. 凍融不僅影響抗體結合能力,還會(huì )降低酶活性。無(wú)論偶聯(lián)至熒光染料、酶還是生物素,偶聯(lián)抗體都應保存于深色試劑瓶中或用金屬箔包裹. 暴露于光線(xiàn)中將損害偶聯(lián)物的活性。特別是熒光偶聯(lián)物易受到光漂白影響,在實(shí)驗的所有階段都應避光。
2、IgG3的同型對照 保存在4℃,避免凍起來(lái)。因為如果出現凍融過(guò)程,該抗體非常容易形成多聚體
二、用疊氮化鈉防止污染
為了防止微生物污染,可將疊氮化鈉加入抗體制備品中達到0.02% (w/v). 的終濃度。但是有時(shí)不能使用疊氮化鈉,有以下兩中情形:
(1)、如果用抗體染色或處理活細胞,或如果用抗體進(jìn)行體內研究,一定要使用不包含疊氮化鈉的制備品。該抗菌劑也對大多數其它生物具有毒性:它阻斷細胞色素電子傳遞系統。
(2)、疊氮化鈉會(huì )干擾氨基參與的任何偶聯(lián),應在偶聯(lián)進(jìn)行前除去。偶聯(lián)后,
抗體可保存于疊氮化鈉中,除此以外,0.01% 硫汞撒(硫柳汞)不含伯胺,也是可接受的替代物。
疊氮化鈉可通過(guò)透析或凝膠過(guò)濾從抗體溶液中除去。IgG 的分子量為 150,000 道爾頓(IgM 為約 600,000);疊氮化鈉的分子量為 65 道爾頓。截留分子量為 14,000 道爾頓的微透析裝置可保留抗體同時(shí)使疊氮化物向外擴散。在保持于 4oC 的磁性攪拌器上的燒杯中,每毫升抗體使用至少一升冷 PBS 并攪拌透析裝置 6 小時(shí)。更換 PBS 兩次,每次更換攪拌至少 6 小時(shí)。如有可能,所有材料都應滅菌并且所得的制備物應無(wú)菌操作。
三、冷凍/融化損傷
重復冷凍/融化循環(huán)可使抗體變性,導致其形成使抗體結合能力降低的聚集物。保存于 -20oC 對于大多數抗體是適當的;保存于 -80oC 無(wú)明顯優(yōu)勢。冰箱不能為無(wú)霜型。 這些冷凍和融化之間的循環(huán)(以減少結霜)恰恰是應該避免的。出于相同原因,抗體試劑瓶應置于具有最小溫度波動(dòng)的冰箱區域,例如朝冰箱后部放置而不是置于門(mén)架上。
有些研究人員加入冷凍保護劑甘油達到 50% 的終濃度以防止冷凍/融化損傷;甘油可將凝固點(diǎn)降低至低于 -20oC。雖然這對于很多抗體是可接受的,但還是不能確保在該保存條件下的穩定性,通常我們參考具體產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)提供的保存方法。在這里,我們也一般不建議將包含甘油的溶液保存于 -80oC,因為該溫度低于甘油的凝固點(diǎn)。還要注意甘油可被細菌污染。如果加入甘油或任何冷凍保護劑,則應當小心操作,以得到無(wú)菌制備物。
應避免抗體在稀釋至工作濃度后在 4℃ 下保存超過(guò)一天。蛋白質(zhì)在高濃度下保存時(shí)一般不易降解,理想的濃度為 1 mg/ml 或更高。這是在抗體溶液中加入蛋白質(zhì)例如 BSA 作為穩定劑的理論基礎。加入的蛋白質(zhì)也有助于減少抗體因結合于容器壁上而造成的損失。對于打算進(jìn)行偶聯(lián)的抗體而言,由于穩定蛋白質(zhì)會(huì )與抗體競爭,降低了偶聯(lián)的效率,所以不應加入穩定蛋白質(zhì)。
一、保存溫度和條件
對于很多抗體而言,保存在-20℃是完全足夠了,沒(méi)有任何證據顯示保存在-80℃會(huì )有更多的好處!分裝成小等份可最大程度減少由凍融造成的損傷,以及從單個(gè)試劑瓶中多次吸取而引入的污染。小等份只需凍融一次,如有剩余,可將剩余物保存于 4oC. 在收到抗體時(shí),在 10,000 × g 下離心 20 秒以沉積截留于試劑瓶螺紋的溶液,并以小等份轉移至低蛋白結合微量離心管中。小等份的量取決于實(shí)驗人員在實(shí)驗中通常采用的量。小等份應不小于10 µl; 等份越小,儲液濃度因抗體蒸發(fā)及吸附于保存瓶表面而受到的影響越大。
在大多數情況下,收到抗體時(shí)在 4oC 下保存一至兩周,然后再冷凍進(jìn)行長(cháng)期保存是可接受的,但也許腹水液是例外,它可能包含蛋白酶,因而應該盡快凍存。同樣,遵照說(shuō)明書(shū)上的建議是重要的。
大部分抗體的運輸條件:一般的運輸過(guò)程需要1-2周的時(shí)間,所以是在4℃的條件下來(lái)完成的。
對于特殊的抗體,如酶、熒光素等偶聯(lián)抗體、IgG3同型抗體等抗體的保存有其注意事項:
1、偶聯(lián)抗體 酶偶聯(lián)抗體不應凍存,而應保存于 4oC. 凍融不僅影響抗體結合能力,還會(huì )降低酶活性。無(wú)論偶聯(lián)至熒光染料、酶還是生物素,偶聯(lián)抗體都應保存于深色試劑瓶中或用金屬箔包裹. 暴露于光線(xiàn)中將損害偶聯(lián)物的活性。特別是熒光偶聯(lián)物易受到光漂白影響,在實(shí)驗的所有階段都應避光。
2、IgG3的同型對照 保存在4℃,避免凍起來(lái)。因為如果出現凍融過(guò)程,該抗體非常容易形成多聚體
二、用疊氮化鈉防止污染
為了防止微生物污染,可將疊氮化鈉加入抗體制備品中達到0.02% (w/v). 的終濃度。但是有時(shí)不能使用疊氮化鈉,有以下兩中情形:
(1)、如果用抗體染色或處理活細胞,或如果用抗體進(jìn)行體內研究,一定要使用不包含疊氮化鈉的制備品。該抗菌劑也對大多數其它生物具有毒性:它阻斷細胞色素電子傳遞系統。
(2)、疊氮化鈉會(huì )干擾氨基參與的任何偶聯(lián),應在偶聯(lián)進(jìn)行前除去。偶聯(lián)后,
抗體可保存于疊氮化鈉中,除此以外,0.01% 硫汞撒(硫柳汞)不含伯胺,也是可接受的替代物。
疊氮化鈉可通過(guò)透析或凝膠過(guò)濾從抗體溶液中除去。IgG 的分子量為 150,000 道爾頓(IgM 為約 600,000);疊氮化鈉的分子量為 65 道爾頓。截留分子量為 14,000 道爾頓的微透析裝置可保留抗體同時(shí)使疊氮化物向外擴散。在保持于 4oC 的磁性攪拌器上的燒杯中,每毫升抗體使用至少一升冷 PBS 并攪拌透析裝置 6 小時(shí)。更換 PBS 兩次,每次更換攪拌至少 6 小時(shí)。如有可能,所有材料都應滅菌并且所得的制備物應無(wú)菌操作。
三、冷凍/融化損傷
重復冷凍/融化循環(huán)可使抗體變性,導致其形成使抗體結合能力降低的聚集物。保存于 -20oC 對于大多數抗體是適當的;保存于 -80oC 無(wú)明顯優(yōu)勢。冰箱不能為無(wú)霜型。 這些冷凍和融化之間的循環(huán)(以減少結霜)恰恰是應該避免的。出于相同原因,抗體試劑瓶應置于具有最小溫度波動(dòng)的冰箱區域,例如朝冰箱后部放置而不是置于門(mén)架上。
有些研究人員加入冷凍保護劑甘油達到 50% 的終濃度以防止冷凍/融化損傷;甘油可將凝固點(diǎn)降低至低于 -20oC。雖然這對于很多抗體是可接受的,但還是不能確保在該保存條件下的穩定性,通常我們參考具體產(chǎn)品說(shuō)明書(shū)提供的保存方法。在這里,我們也一般不建議將包含甘油的溶液保存于 -80oC,因為該溫度低于甘油的凝固點(diǎn)。還要注意甘油可被細菌污染。如果加入甘油或任何冷凍保護劑,則應當小心操作,以得到無(wú)菌制備物。
應避免抗體在稀釋至工作濃度后在 4℃ 下保存超過(guò)一天。蛋白質(zhì)在高濃度下保存時(shí)一般不易降解,理想的濃度為 1 mg/ml 或更高。這是在抗體溶液中加入蛋白質(zhì)例如 BSA 作為穩定劑的理論基礎。加入的蛋白質(zhì)也有助于減少抗體因結合于容器壁上而造成的損失。對于打算進(jìn)行偶聯(lián)的抗體而言,由于穩定蛋白質(zhì)會(huì )與抗體競爭,降低了偶聯(lián)的效率,所以不應加入穩定蛋白質(zhì)。
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